La ubiquitina (o ubicuitina) es una pequeña proteína reguladora que ha sido encontrada en la mayoría de los tejidos de los organismos eucariotas. Una de sus muchas funciones es dirigir el reciclaje de proteínas. La ubiquitina puede asociarse a proteínas y marcarlas para su destrucción. El marcaje de ubiquitina dirige las proteínas al proteosoma, que es un gran complejo de proteínas que encontramos en la célula y que degrada y recicla proteínas innecesarias. Este descubrimiento ganó el premio Nobel en química en 2004.
La ubiquitina (originalmente, polipéptido omnipresente –ubicuo- inmunopoyético) fue identificada en 1975 como una proteína de 8.5 kDa, de función desconocida, expresada en todas las células eucariotas. Las funciones básicas de la ubiquitina y los componentes de la vía de la ubiquitinización fueron aclaradas a principios de los años 1980 con el innovador trabajo realizado en el Fox Chase Cancer Center con Aaron Ciechanover, Avram Hershko, y Irwin Rose, por el cual recibieron el premio Nobel de Química en 2004.
El sistema de ubiquitinización fue caracterizado al principio como un sistema proteolítico de ATP-dependencia presente en extractos celulares. Un polipéptido de calor estable presente en estos extractos, el factor 1 proteolítico ATP-dependiente (APF-1), fue encontrado en el proceso ATP (y Mg2+) dependiente de unión covalente del sustrato proteico a la lisoenzima. Diversas moléculas APF-1 se asocian a un solo sustrato molecular por un acoplamiento isopéptídico, y los conjugados que forman son rápidamente degradados con la liberación de APF-1. Poco después que la conjugación proteica APF-1 fuera caracterizada, la APF-1 fue identificada como ubiquitina. El grupo carboxilo (COOH) del residuo de glicina del carboneo terminal de ubiquitina (Gly76) fue identificado como la mitad conjugada al sustrato de los residuos de lisina.
La ubiquitina es una pequeña proteína que existe en todas las células eucariotas. Esta realiza sus funciones gracias a la conjugación con una gran gama de proteínas diana. La ubiquitina está formada de 76 aminoácidos y tiene una masa molecular de aproximadamente 8.5 kDa. Entre sus características importantes se distinguen su cola C-terminal y los 7 residuos de lisina. Su estructura está sumamente conservada en el linaje eucariota: la ubiquitina del ser humano y la ubiquitina de la levadura comparten un 96 % de la secuencia identificadora de aminoácidos.
La secuencia humana de la ubiquitina, en el código de una letra, (los residuos de lisina, en negrita) es la siguiente:
En los mamíferos, la ubiquitina está codificada por 4 genes diferentes. El UBA52 y el RPS27A son los genes que codifican las copias de ubiquitina que se acoplan a las proteínas ribosómicas L40 y S27a (respectivamente) para su traducción. También encontramos el UBB y el UBC, que son codificadores de proteínas precursoras de la poliubiquitina.
No se conoce ninguna ubiquitina ni la maquinaria de ubiquitinización necesaria en las células procariotas. Sin embargo, la ubiquitina se cree que desciende de proteínas procariotas similares a ThiS o MoaD. Estas proteínas procariotas, a pesar de tener poca secuencia de identificación (ThiS contiene únicamente un 14 % de secuencia identificadora respecto la ubiquitina), comparten la misma conformación proteica. Además comparten también química del azufre con la ubiquitina. Así, el MoaD, que está implicado en la biosíntesis del cofactor molibdeno, interacciona con el MoeB, que actúa como una enzima E1 de activación de la ubiquitina para MoaD, reforzando la asociación entre estas proteínas procariotas y el sistema de ubiquitina. Un sistema similar es el que existe para el ThiS, con su enzima E1 ThiF. Así, también se cree que la proteína Urm-1 de la levadura Saccharomyces cerevisiae, que es un modificante asociado a la ubiquitina, es " un fósil molecular " que conecta la relación evolutiva entre las proteínas procariotas similares a la ubiquitina y dicho polipéptido.
La ubiquitinización es un proceso enzimático de modificación proteica post-traduccional (PTM) en el cual el ácido carboxílico de la glicina terminal (que encontramos en el motivo de di-glicina de la ubiquitina activada) forma un enlace amida con el grupo amino épsilon de la lisina en la proteína modificada. El proceso de marcar una proteína con ubiquitina (ubiquitinización) consta de una serie de pasos:
El paso inicial implica la producción de un producto intermedio adenilil-ubiquitina. El segundo paso consiste en transferir la ubiquitina al centro activo del E1, concretamente uniéndose al residuo de cisteína, con la liberación de AMP. Este paso se realiza mediante un acoplamiento tioéster entre el carbono terminal del grupo carboxilo de la ubiquitina y el grupo sulfhidrilo o tiol (-SH) de la cisteína del E1.
En la cascada de ubiquitinización, la enzima E1 puede unirse con docenas de enzimas E2, que pueden a su vez unirse con unos cientos de enzimas E3 de un modo jerárquico. Otras proteínas similares a la ubiquitina (como las ULPs) también se modifican a través de la cascada E1-E2-E3.
En la imagen podemos ver gráficamente el proceso de ubiquitinización descrito.
Las enzimas E3 poseen uno de los siguientes posibles dominios:
Así, la transferencia e interacción puede ocurrir de dos modos:
El complejo de promoción de la anafase (APC) y el complejo SCF (por Skp1-Cullin-F-complejo proteico de caja –o box-) son dos ejemplos de subunidades de las E3 involucradas en el proceso de reconocimiento y ubiquitinización de proteínas diana específicas para su degradación en el proteosoma.
Después de la adición de una sola ubiquitina a un sustrato proteico (monoubiquitinización), más moléculas de ubiquitina pueden ser añadidas a la proteína en cuestión, produciendo una cadena proteica poliubiquitinizada. Además, hay que destacar que algunos sustratos son modificados con la adición de dichas moléculas de ubiquitina a los múltiples residuos de lisina de la proteína diana en un proceso llamado multiubiquitinización.
La ubiquitina posee un total de 7 residuos de lisina. En un principio los tipos de cadenas de ubiquitina identificadas eran aquellos unidos por vía lisina-48. Sin embargo, un trabajo más reciente ha dado a conocer una amplia variedad de acoplamientos que implican a todos los residuos posibles de lisina y además cadenas unidas al extremo amino terminal de una ubiquitina (también llamadas “cadenas lineales”). El trabajo, publicado en 2007, ha demostrado la formación de cadenas de ubiquitina con bifurcaciones que contienen múltiples tipos de unión. Hay que destacar además que se han encontrado cadenas de ubiquitina "atípicas" (sin unión a lisina-48) y han sido publicadas en una revista por Ikeda y Dikic.
El sistema de ubiquitinización funciona en una gran variedad de procesos celulares, incluyendo:
Procesación de antígenos
La cadenas poliubiquitinizadas más estudiadas (las unidas a lisina-48) marcan proteínas para su posterior destrucción, proceso llamado proteólisis. Al menos cuatro moléculas de ubiquitina tienen que estar unidas a residuos de lisina de la proteína a destruir para que esta sea reconocida por la proteína 26S. Las cadenas unidas a la lisina 63 dirigen la localización de las proteínas. La monoubiquitinización de las proteínas también marca la localización de las proteínas. El proteasoma o proteosoma es un complejo, con estructura en forma de barril y dos cámaras en su interior, donde la proteólisis tiene lugar. Las proteínas son degradadas rápidamente en pequeños péptidos (normalmente de 3 a 24 residuos aminoacídicos de longitud). Las moléculas de ubiquitina se escinden de la proteína inmediatamente antes de la destrucción y son recicladas para un uso posterior. Aunque la mayoría de los substratos que van a degradarse al proteasoma son ubiquitinizados, existen algunas proteínas que no son ubiquitinizadas y que sin embargo se destinan también al proteasoma.
La ubiquitina puede marcar también a proteínas transmembrana (por ejemplo a los receptores) para su extracción desde las membranas y cumplir varios papeles de señalización dentro de la célula. Las moléculas transmembrana de la superficie celular que están marcadas con ubiquitina están a menudo monoubiquitinizadas, y esta modificación altera la localización subcelular de la proteína, marcando normalmente la proteína para la destrucción en los lisosomas.
Las histonas están normalmente monoubiquitinizadas y asociadas con la señalización o el marcaje estructural.
La ubiquitina tiene siete residuos de lisina que pueden servir como puntos de poliubiquitinización, que son: K48, K63, K6, K11, K27, K29 y K33. Estos puntos de unión pueden definir y determinar señales únicas que son reconocidas por proteínas de unión a la ubiquitina, las cuales tienen motivos de interacción con la ubiquitina (UIM) con los que se unen a la propia molécula proteica. Se cree que las distintas uniones son reconocidas por proteínas que son específicas para reconocer la topología intrínseca del enlace. Un ejemplo es la unión K63, conocida por estar implicada en el reconocimiento del ADN dañado en zonas de rotura de la doble cadena helicoidal del material hereditario. La unión K63 parece estar colocada en la histona H2AX por el par de ligasas E2/E3, Ubc13-Mms2/RNF168. Esta cadena de K63 aparece para elegir RAP80, que contiene UIM, y así RAP80 ayuda a localizar BRCA1. Esta vía elegirá las proteínas necesarias para la reparación de la recombinación homóloga.
Algunos trastornos genéticos asociados a la ubiquitina son:
El gen de la ubiquitina B puede estar transcrito incorrectamente debido a una secuencia monótona de nucleótidos en la región codificante del gen. Como resultado, se produce una eliminación de un dinucleótido en el ARNm causando un desplazamiento en la pauta de lectura. Cuando se traducen a proteínas, las ubiquitinas disfuncionales han perdido su C-terminal de glicina y en su lugar tienen un péptido de 20 aminoácidos (Ubiquitina B+1 o UBB+1). Se ha demostrado que las UBB+1 se acumulan de forma selectiva en tautopatías y poliglutaminopatías.
Los anticuerpos anti-ubiquitina son usados en histología para identificar acumulaciones anormales de proteína dentro de las células que son marcadores de la enfermedad. Estas acumulaciones se llaman cuerpos de inclusión (inclusión bodies). Algunos ejemplos de estas inclusiones anormales en las células son
Aunque la ubiquitina es el modificador post-traduccional mejor entendido, existe una familia creciente de proteínas similares a las ubiquitinas (UBL) que modifican las dianas celulares de una manera paralela y a la vez distinta a la de la ubiquitina. Las UBL conocidas incluyen: pequeños modificadores parecidos a la ubiquitina (SUMO), ubiquitina de reacción cruzada (UCRP, también conocidas como gen estimulado por interferón-15 ISG15), ubiquitina relacionada con el modificador-1 (URM1), proteína-8 reguladora del desarrollo y expresión de la célula neuronal precursora (NEDD8, también llamada Rub1 en el S. cerevisiae), antígeno leucocitario humano F-asociado (FAT10), autofagia-8 (ATG8) y -12 (ATG12), Fau ubiquitina (FUB1), MUB (UBL anclada a la membrana), ubiquitina dobladora modificadora-1 (UFM1) y proteína similar a la ubiquitina-5 (UBL5, que es más conocida como homóloga a la ubiquitina-1 (Hub-1) en el S. pombe). Si bien estas proteínas sólo comparten la secuencia identificadora primaria con la ubiquitina, están estrechamente relacionadas tridimensionalmente. Por ejemplo, las SUMO sólo comparten un 18% de secuencia identidad respecto la ubiquitina, pero contienen el mismo pliegue estructural. Este pliegue se llama “pliegue de la ubiquitina” o a veces pliegue ubiquitón. FAT 10 y UCRP contienen dos de estos pliegues. Este compacto pliegue beta se encuentra en la ubiquitina, en las UBL y en las proteínas que comprenden un dominio de ubiquitina.
Estas moléculas relacionadas entre sí tienen nuevas funciones e influencia en diversos procesos biológicos. También hay una regulación cruzada entre varias de las vías de conjugación dado que algunas proteínas pueden ser modificadas por más de una UBL, y a veces incluso en el mismo residuo de lisina. Por ejemplo, modificaciones en las SUMO a menudo actúan de forma antagónica a la ubiquitinización y sirven para estabilizar substratos proteicos. Proteínas conjugadas con las UBL no son identificadas para degradarse en el proteasoma, sino que tienen función en diversas actividades reguladoras. La unión de las UBL puede alterar la conformación del substrato, afectar a la afinidad por los ligandos u otras moléculas de interacción, alterar la localización del substrato e influenciar en la estabilidad de la proteína. Las UBL son estructuralmente similares a la ubiquitina y son procesadas, activadas, conjugadas y liberadas del conjugado por pasos enzimáticos parecidos a los correspondientes de la ubiquitina. Las UBL son también traducidas con extensiones C-terminal que son procesadas para exponer la invariante C-terminal LRGG. Estos modificadores tienen sus propias enzimas específicas E1 (activación), E2 (conjugación) y E3 (ligación) que conjugan las UBL a dianas intracelulares. Estos conjugados pueden ser revertidos por unas isopeptidasas UBL específicas que tienen mecanismos similares a los de las enzimas de desubiquitinización.
Dentro de algunas especies, el reconocimiento y destrucción de las mitocondrias de los espermatozoides tiene lugar a través de un mecanismo en el que la ubiquitina está implicada, siendo este el responsable de la eliminación de las mitocondrias después de la fertilización.
ANUBL1; BAG1; BAT3; DDI1; DDI2; FAU; HERPUD1; HERPUD2; HOPS; IKBKB; ISG15; LOC391257; MIDN; NEDD8; OASL; PARK2; RAD23A; RAD23B; RPS27A; SACS;SF3A1; SUMO1; SUMO2; SUMO3; SUMO4; TMUB1; TMUB2; UBA52; UBB; UBC; UBD; UBFD1; UBL4; UBL4A; UBL4B; UBL7; UBLCP1; UBQLN1; UBQLN2; UBQLN3; UBQLN4; UBQLNL; UBTD1;UBTD2; UHRF1; UHRF2;
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